Équipements

Microscopes

Microscope confocal à disque rotatif Zeiss
  • « Cell Observer SD »
  • Microscope inversé Zeiss Observer Z1
  • Chambre d’incubation, T et CO2 contrôlés
  • 2 caméras Zeiss AxioCam 506 Mono
  • Laser : 488, 555 et 639 nm
  • Objectifs :
    • 10x / 0.3 EC PlanNeoFluor
    • 20x / 0.8 PlanApochromat
    • 40x / 1.3 PlanApochromat
    • 63x / 1.4 PlanApochromat DIC
    • 100x / 1.4 PlanApochromat DIC
Microscope confocal Nikon A1R
  • Microscope inversé Nikon Eclipse Ti
  • Modes d’acquisitions : galvano et résonnant (haute vitesse)
  • Laser : 405, 457, 471, 488, 514, 561 et 640 nm
  • Objectifs
    • 10x / 0.5 S Fluor
    • 20x / 0.75 S Fluor DIC N2
    • 40x / 0.75 Plan Fluor DIC M N2
    • 60x / 1.4 Plan Apo VC DIC N2
    • 100x / 1.4 Plan Apo DIC N2
Microscope confocal Zeiss LSM 700
  • Microscope inversé Zeiss Observer Z1
  • Chambre d’incubation, T et CO2 contrôlés
  • Laser: 405, 488, 555 et 639 nm
  • Techniques : FRAP, FRET et séparation spectrale
  • Capture en DIC
  • Objectifs :
    • 10x / 0.25 N AchroPlan
    • 20x / 0.8 PlanApo DIC
    • 25x / 0.8 LCI PlanApoFluor DIC
    • 40x / 1.3 PlanApo DIC
    • 63x / 1.4 PlanApo DIC
Microscope confocal Zeiss LSM 880, NLO, Airyscan
  • Microscope inversé Zeiss Observer Z1
  • Lasers : argon multi lignes, 561 nm et 633 nm
  • 2 Photons
  • Techniques : FRAP, FRET, FLIM (à venir)
  • Acquisition en mode rapide jusqu’ à 13 images seconde
  • Objectifs :
    • 10x / 0.25 N AchroPlan, Ph1
    • 20x / 0.8 Plan-Apochromat
    • 40x / 1.0 W Plan-Apochromat, DIC
    • 63x / 1.4 Plan-Apochromat, DIC
Microscope inversé DeltaVision Elite

Instrument équipé d’une chambre dans laquelle la température et le CO2 sont contrôlés, permettant ainsi l’observation de cellules vivantes sur une longue période de temps.

  • Logiciel softWoRx
  • Capture mutidimentionelles en λ,T, Z et possibilité de déconvolution
  • Techniques : DIC, épifluorescence
  • Caméra : Coolsnap HQ2
  • Objectifs : 20x/0.70, 60x/1.42 oil, 100x/1.42 oil
  • Filtres disponibles:
    • Live Cell : CFP 470/24, GFP 525/50, YFP 559/38, mCherry 632/60, POL DIC
    • Standard : DAPI 435/4, FITC 525/50, TRITC 594/45, CY5 676/34, POL DIC
    • Alexa set : DAPI 435/48, FITC 525/50, AF594 632/60, CY5 676/34, POL DIC

 

Microscope inversé LEICA DMIRB
  • Techniques : fond clair, contraste de phase, épifluorescence (DAPI, GFP, Cy3)
  • Caméra : Retiga EX-i
  • Logiciels : Q-Capture
  • Objectifs :
    • 2.5x N-Plan 2.5x / 0.07
    • 5x N-Plan 5x / 0.12 Ph 0
    • 10x HC Pl Fluotar 10x / 0.30, Ph 1
    • 20x N Plan L 20x / 0.4, corr, Ph 1
    • 40x HCX Pl Fluotar L40x / 0.60 corr, Ph 2
Microscope Zeiss Axio-Imager Z 1
  • Techniques : fond clair, DIC, épifluorescence (DAPI, GFP, Cy3), Lampe HBO 100 W
  • Caméra Zeiss HRM (monochrome) et Canon 5DMKII
  • Logiciel Axio-Vision
  • Objectifs :
    • 10x / 0.45 Plan-Apochromat, DIC I
    • 20x / 0.80 Plan-Apochromat, DIC II
    • 40x / 1.3 Plan-Apochromat, DIC III
    • 63x / 1.4 Plan-Apochromat, DIC III
    • 100x / 1.4 Plan-Apochromat, DIC III
Stéréomicroscope à fluorescence LEICA MZ FLIII
  • Techniques : fond clair, fond noir, épifluorescence (GFP)
  • Caméra : Canon 5DMkII
  • Logiciel : Canon EOS Utility-remote capture
  • Grossissement : (0.8x à 10x) x10

Stations d’analyse d’images

Trois stations munies des logiciels NIS-Elements (Nikon), Metamorph (Molecular Devices), softWoRX suite (Applied Precisions), ImageJ (NIH) et IMARIS (BitPlane).

Outils de présentation

Le poste d’infographie de la plateforme de bio-imagerie de l’IRIC est doté des logiciels Adobe Photoshop, Illustrator, InDesign et d’une imprimante couleur permettant la production de documents grand format de grande qualité.

Suivez l'IRIC

Logo UdeM